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實驗案例
首頁 實驗案例 一臺全自動單細胞懸液制備儀搞定:小鼠肝 / 肺組織高活單細胞
2026/3/24 11:17:21
一臺全自動單細胞懸液制備儀搞定:小鼠肝 / 肺組織高活單細胞
來源:上海凈信

還在為組織剪不碎、消化控不好、細胞死得多、懸液團塊多發愁?傳統手工制備小鼠肝臟、肺臟單細胞懸液,費時費力、重復性差、細胞活率低,直接拖慢單細胞測序、流式分析、原代培養等關鍵實驗。今天結合小鼠肝臟 + 肺臟實操案例,帶你看懂:一臺全自動單細胞懸液制備儀,如何把復雜組織解離變成省心、穩定、高活率的標準化流程。

單細胞懸液制備儀裝機圖

01、傳統手工制備的3大痛點

1.操作繁瑣耗時長剪碎、吹打、消化、終止、過濾、洗滌全手動,一人做多樣本易出錯,全程至少 1–2 小時。

2.細胞活率與得率不穩定力度不均、消化過度 / 不足、碎片過多,活率波動大,團塊干擾后續上機。

3.重復性差、難復現人為操作差異大,同一組織不同人做,結果天差地別,文章數據難復現。

02、核心優勢

一鍵自動化:預設肝、肺等組織專用程序,放管→選程序→啟動,全程自動完成。

溫和解離:恒溫酶解 + 輕柔機械剪切,細胞活率更高、碎片更少。

結果穩定:批次間一致性好,細胞得率與活率顯著提升,適配單細胞測序、流式、類器官培養。

多組織通用:小鼠肝、肺、腫瘤、脾、腎等組織均可高效處理。

03、小鼠肝臟/肺臟單細胞制備

實驗準備:

試劑:專用消化酶、終止液、PBS、碎片去除劑

耗材:2 mL 消化管、100 μm 細胞濾網、離心管

儀器:全自動單細胞懸液制備儀

標準流程:

1、連接儀器電源,打開開關,選好程序以備用。

2、消化酶和終止液提前用流動自來水解凍,讓其混合更加均勻。

3、小鼠斷頸處死后,取出肝臟部,放入有PBS的培養皿中,放在冰上。

4、將選取的肝臟、肺臟組織用PBS洗滌后,用眼科剪剪碎、放入2ml消化管中,加入1ml左右消化酶。

5、放到模塊上,選擇對應程序,點擊運行開始。

6、時間結束后儀器自動停止。

7、用100um濾網過濾,加入終止液終止消化(消化液:終止液=1:1)

8、客戶要求未裂紅,加入500ulPBS+1ml碎片去除劑,離心后棄上清,然后洗細胞兩次。

9、最后加入少量無菌PBS打散混勻底部沉淀細胞,即可得到單細胞懸液。

小鼠肺(左)和小鼠肝臟(右)顯微鏡結果圖

04、適用場景全覆蓋

單細胞測序(scRNA-seq)、流式細胞術分析/分選、原代細胞分離與培養、類器官構建、腫瘤異質性研究、免疫細胞、干細胞相關實驗

05、總結

從組織塊→高質量單細胞懸液,全自動單細胞懸液制備儀真正做到:省時、省力、穩活率、高重現尤其適合小鼠肝臟、肺臟等軟組織批量處理,讓新手也能穩定做出合格樣本。科研不內耗,從標準化單細胞制備開始。

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